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KAPA hgDNA定量&QC試劑盒，包含人類基因組DNA樣品NGS文庫構建前，所有基于qPCR定量及質量評估的試劑。

KAPA hgDNA定量&QC試劑盒，是基于SYBR Green I染料法優(yōu)化的高質量qPCR檢測試劑盒，包含KAPA SYBR® FAST qPCR Master Mix預先稀釋的一系列DNA標準品，以及針對于人類基因組單拷貝的高度保守區(qū)域的不同位點所設計的引物預混液。小片段所對應的引物，用于獲得定量的結果，而額外的引物，用于獲得在DNA樣本中可擴增模板量(質量高的DNA片段)的信息。這個試劑盒由此所產生的質量分數(shù)(即Q-ratios)，可以用于預測文庫的產量，或者對于如FFPE DNA這類樣本質量變化很大的樣本的工作流程進行調整。

產品特色

在單次檢測中，同時評估樣本量以及樣本質量

可以將質量分數(shù)(Q-ratios)與測序相關指標相關聯(lián)

高性能的KAPA SYBR FAST qPCR Master Mix

預先稀釋好的DNA標準品以及可以直接使用的引物

多功能、易于自動化的工作流程

建立樣本質量控制中低條件

指示樣品是否有足夠的量以及質量來成功構建文庫

未通過質控的樣本，不再進行后續(xù)文庫構建以及測序步驟，從而節(jié)約時間和精力

通過檢測進行測序的樣本 (Sequenced Sample) 和Q值不夠、未進行測序的樣本(QNS，Not Sufficient) 各自的Q-ratios。

數(shù)據(jù)來源于Dartmouth-Hitchcock醫(yī)療中心(DHMC)的轉化醫(yī)學實驗室。在DNA抽提后以及文庫構建之前，使用KAPA hgDNA定量&QC 試劑盒，可以幫助使用者建立一個額外的質量控制流程，用于在早期的過程中預測測序的質量。DHMC在其擴增子測序工作流程中，根據(jù)經(jīng)驗，使用Q129/41 bp>0.5和Q305/41 bp > 0.2作為判斷標準。

分析NGS文庫構建工作流程

Q-ratios可以幫助判斷NGS文庫構建工作流程中的瓶頸

對于FFPE樣本，文庫質量和測序中質量的主要限制因素是：起始DNA轉化成連接有接頭的文庫分子的轉化率不高

文庫的轉化率，為在Illumina測序平臺上進行靶向重測序而制備

分別從樣本質量參差的80-100 ng FFPE DNA樣本(橙色)和商用人類基因組DNA(灰色)，使用KAPA LTP文庫構建試劑盒來構建測序文庫。FFPE DNA樣本在用Covaris打斷之前，用KAPA hgDNA定量&QC試劑盒進行檢測，然后按照Q-ratios(DNA質量)沿X軸升序排列。Q-ratios如圖中標注。片段化的DNA(平均大小在180 bp左右)在建庫之前，用Qubit® HS dsDNA (Life Technologies) 進行定量；在連接接頭、形成文庫分子之后，使用基于qPCR的KAPA文庫定量試劑盒進行定量。結果顯示，F(xiàn)FPE樣本的文庫轉化率(Conversion Rate，起始DNA分子轉化成連接有接頭的文庫分子的百分比，%)明顯低于高質量的DNA樣本，使得FFPE樣本的文庫分子多樣性受到限制，并且需要在文庫擴增步驟中采取更多的循環(huán)數(shù)才能得到足夠多的文庫分子進行靶標捕獲，從而使FFPE樣本的文庫的重復率(duplication rate) 更高，靶標覆蓋率(target coverage)更低。

從FFPE DNA樣本中獲得樣本制備的可操作數(shù)據(jù)

Q129/41 比值和測序中的關鍵指標（如重復率）具有相關性

從250 ng Covaris打斷的FFPE DNA樣本(n=14)和對照組DNA(分別從培養(yǎng)細胞、新鮮冰凍樣本和血液中提取，n=6)，進行手動文庫構建。樣本按照Q129/41-比例升序在x軸上從左至右排列(FFPE樣本用黃色表示，對照組DNA用橙色表示)。文庫構建采用的是NEBNext® 試劑(New England Biolabs)，其中靶標捕獲前和靶標捕獲后的擴增環(huán)節(jié)(10個循環(huán))采取KAPA HiFi 試劑盒。靶標捕獲使用的是定制的SeqCap EZ panel (300 genes,0.9 MB)。 在Illumina HiSeq平臺上進行了測序(2 x 100 bp)。FFPE樣本的平均靶標覆蓋率(藍色點)是對照組的四倍(1,247X, vs. 301X)，平均重復率(紅色點)是對照組的兩倍(75% vs. 38%)。Q129/41 比值 > 0.4 的FFPE樣本所產出的文庫能夠達到低測序質量要求。

訂貨信息

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